К оглавлению...
Приложение 1.
Методы выявления тканевых форм микромицетов
Импрегнация по методу Гомори-Грокотт.
Фиксация: 10% формалин.
Растворы: 2% хромовая кислота
5% нитрат серебра
3% метенамин:
Hexamethylentetraamine 3,0
дистиллированная вода 100.0
5% буры
Маточный раствор метенамин-серебра:
5% нитрат серебра 5,0
3% метенамин 100,0
(раствор сохраняется в холодильнике в течение месяца).
1% Na бусульфит
0,1% хлорное золото (раствор может быть использован повторно).
2% Na тиосульфат (гипосульфит)
Маточный раствор светового зеленого
Light green (yellow) 0,2
Дистиллированная вода 100,0
Ледяная уксусная кислота 0,2
Рабочий раствор светового зеленого:
Маточный раствор 10,0
Дистиллированная вода 50,0
Процедура окраски:
- Денарафинированные срезы довести до воды.
- Обработать 5% хромовой кислотой в течение 1 часа.
- Промыть проточной водой в течение нескольких секунд.
- Промыть 1% раствором биосульфита Na в течение 1 мин для освобождения от остатков
хромовой кислоты.
- Промыть проточной водой 5-10 минут.
- Промыть в 3-4 порциях дистиллированной воды.
- Препараты поместить в рабочий раствор метанамин-серебра при 58-60 оС
на 30-60 минут до приобретения ими желтовато-коричневой окраски. Контролировать
окраску под микроскопом.
- Промыть в 6 порциях дистиллированной воды.
- Тонировать в 0,1% растворе хлорного золота в течение 2-5 минут.
- Промыть в дистиллированной воде.
- Закрепить окраску в 2% растворе Na тиосульфата в течение 2-5 минут.
- Промыть в проточной воде.
- Докрасить в рабочем растворе светового зеленого 30-45 секунд.
- Дегидротировать и заключить препараты в бальзам.
Результаты: Грибы окрашены очень контрастно в черный цвет. Муцин – в
темно-серый цвет.
Внутренние части гифов грибов – в темно-розовый. Окружающие ткани
окрашены в светло-зеленый.
Источник: Grocott R.C. // Am.J.ournal of Clinical Path., 1955.- P. 975-979.
Окраска по методу Гридли
Фиксация: 10% формалин либо другие методы фиксации.
Растворы:
4% раствор хромовой кислоты
Реактив Шиффа
1Н HCl
10% метабисульфит Na
Сернистая вода: 10% Na метабисульфит – 6,0
1Н HCl
Дистиллированная вода
Раствор альдегид фуксина:*
Основной фуксин – 1,0
Этиловый спирт 70% - 200,0
Паральдегид – 2,0
HCl концентрированная – 2,0
Хранить в холодильнике.
Раствор Metanil Yellow:
Metanil Yellow – 0,25
Дистиллированная вода – 100,0
Ледяная уксусная кислота – 2 gtt
Процедура окраски
- Мазковые препараты, отпечатки или денарафинированны срезы довести до воды.
- Залить 4% хромовой кислотой на 1 час.
- Промыть проточной водой – 5 мин.
- Препараты поместить в реактив Шиффа на 15-20 мин.
- Промыть в 3-х порциях сернистой воды.
- Промыть проточной водой – 15 мин.
- Препараты поместить в раствор альдегид фуксина на 15-30 мин.
- Пролить излишки окраски 96% этиловым спиртом.
- Промыть в воде.
- Докрасить раствором метаниловым желтым – 1 мин.
- Промыть в воде.
- Дегидратировать 96% спиртом, просветлить в ксилоле и заключить в бальзам.
Результаты: Грибы, эластические волокна и муцин – розовые до пурпурных.
Другие тканевые
структуры – желтые.
Источник: Gridley M.F. Am.J.Clin.Path., 23, 303-307, 1953.
Окраска методом Грама в модификации Боголепова
- На фиксированный мазок наливают свежеприготовленные раствор эозина 2-3 мин.
(насыщенный спиртовой р-р эозина 5 мл + H2O дистил.95 мл).
- Сливают краску и, не споласкивая в воде, подсушивают фильтрованной бумагой.
- Окрашивают карболовым генцианвиолетом (через фильтрованную бумагу) – 5 мин.
(1 часть насыщенного спиртового раствора генцианвиолета. 10 частей 2% водного
р-ра карболовой кислоты).
- Ополаскивают препарат в водопроводной воде 15-30 ”.
- Обрабатывают раствором Люголя 2-3 мин (кристаллический I – 1 г , KI – 2 г,
дистил. вода – 300 мл). Раствор хранить в темноте. Обсушивают фильтрованной бумагой.
- Дифференцируют 96 о спиртом, наливая и сливая его, пока отходит
синяя краска и не обесцвечивается мазок (~ 20-60 ”).
- Хорошо промывают в проточной воде и высушивают фильтрованной бумагой.
Результат: Грам + микроорганизмы окрашиваются в темно-синий цвет. Особенно
четко
выявляются актиномицеты и нокардии. Дрожжеподобные грибы (Грам+) окрашиваются
непостоянно.
Окраска по методу Brown и Brenn
(модификация окраски по Граму)
Фиксация: 10 % формалин
Растворы:
1% кристалвиолет
5% Na-бикарбонат
Раствор Люголя:
Йод кристаллический – 1,0
Йодистый натрий – 2,0
Дистиллированная Н2О – 300,0
Насыщенный раствор основного фуксина:
Основной фуксин ~ 0,25
Дистиллированная Н2О – 100,0
Рабочий раствор основного фуксина
Насыщенный раствор основного фуксина – 0,1
Дистиллированная Н2О – 100,0
0,1% раствор пикриновой кислоты в ацетоне.
Процедура окраски
- Мазковые препараты, отпечатки или денарафинированны срезы заливают 1 мл (20
gtt) 1% раствора кристалвиолета и добавляют 5 gtt 5% раствора бикарбоната na.
Слегка перемешивают в течение 1 мин. (Возможно предварительное смешение растворов).
- Промыть проточной водой.
- Обработать раствором Люголя в течение 1 мин.
- Прополоскать в воде и просушить фильтрованной бумагой.
- Обесцветить смесью равных частей эфир-ацетона до отхождения краски.
- Окрасить рабочим раствором основного фуксина – 1 мин.
- Промыть водой и сполоснуть в ацетоне.
- Дифференциальная окраска 0,1% пикриновой кислотой в ацетоне, пока препарат
не станет желто-розового цвета.
- Быстро сполоснуть в ацетоне, затем в смеси ацетол-ксилол, затем в ксилоле.
- Заключить препарат в бальзам.
Результаты: Грам-положительные микроорганизмы – лилово-синие. Грам-отрицательные
- красные. Ядра клеток – красно-коричневые. Другие тканевые структуры – желтые.
Источник: Brown J.H. and Brenn L. Bulleten of the Hopkins Hospital,
48, 69, 1931.
Окраска методом Циля в модификации Киньона
- На фиксированный мазковый препарат наливают через фильтрованную бумагу карболовый
фуксин Киньон и подогревают над пламенем спиртовки до появления паров (фуксин
основной – 4 г., фенол – 8 г, спирт 96 о – 20 мл, дист. вода – 100
мл).
- Cливают краску, удаляют фильтрованную бумагу и основательно промывают в водопроводной
воде.
- Дифференцируют 1% водным р-ром H2SO4 до обесцвечивания
(30-60”).
- Докрашивают 2,5% р-ром метиленового синего на 96 о спирте (30”).
- Споласкивают в воде и высушивают фильтрованной бумагой.
Результат: Кислотоупорные микроорганизмы (микобактерии ТБЦ, лепры и
нокардии, а также спорообразующие дрожжи) окрашиваются в красный цвет на голубом
фоне.
Окраска глюкозоамингликаном (кислых полисахаридов) альциановым
синим по методу Моури (1960)
- Денарафинируют срезы до воды.
- Помещают на 1-2 часа в 0,5-2% АС на 3% уксусной кислоты или на 0,1 М буфера
(цитрат Na – HCl) с рН 2,2-2,4.
- Промывают в 3% уксусной кислоте, затем в воде.
- Проводят через спирты и заключают в бальзам.
Результат: Капсулы Cryptococcus neoformans и Cryptococсus
albidus окрашены в ярко-голубой цвет.
Окраска калькофлуором белым
Приготовление красителя: растворить 0,1 г калькофлуора белого (M2R) в 100,0
мл дистиллированной воды при слабом нагревании. После этого смешать небольшую
каплю 10% раствора КОН на предметном стекле с каплей 0,1 % раствора красителя
и поместить в приготовленную смесь исследуемый объект, покрыть покровным стеклом
и осторожно нагреть.
Рассматривать в УФЛ при малом, а затем большом увеличении.
Результат: дрожжевые клетки, псевдомицелий и мицелий выявляются в виде
яркой яблочно-зеленой флуоресценции. Особенно четко становятся видны септы грибов.
Примечание: Поскольку смесь растворов (0,1%) калькофлуора и (10%) КОН при хранении
выпадает в осадок, каждый раствор сохраняется по отдельности.
Приложение 2.
Наиболее часто употребляемые питательные среды для выделения
и культивирования грибов
Агар Сабуро (наиболее широко
используемая питательная среда):
Глюкозы - 4 г
Пептона - 1 г
Агара - 1,8 г
Воды - 100 мл
Глюкозный бульон Сабуро:
Глюкозы - 40 г
Пептона - 10 г
Воды - 1000 мл
Нагревают до кипения и затем разливают в пробирки по 10 мл в каждую. Стерилизация
при 1 атм. - 15 минут.
Сусло – агар /другая,
широко распространенная среда, применяемая для первичного выделения дерматофитов
и дрожжевых грибов/:
Солодовое сусло получают на пивоваренных заводах. Оно содержит 10-15% сахара
и имеет плотность 16-18 о по Биллингу. Сусло фильтруют, разбавляют
в 2 раза водопроводной водой, разливают в пробирки или колбы и стерилизуют при
1 атм. 30 минут. Затем на сусло готовят 2% агар.
Картофельный агар с глюкозой:
Среда рекомендуется для выявления типов роста /филаментации/ аспорогенных дрожжей
при посеве штрихами в чашки Петри. Очищенный и измельченный картофель /100 г/
заливают водопроводной водой /500 мл/ и кипятят в течение 15 мин. После этого
отвар процеживают через несколько слоев марли и стерилизуют при 120 о
в течение 30 минут. Перед употреблением отвар фильтруют через бумажный фильтр,
добавляют 1% глюкозы и 2 % агара. Среду стерилизуют при 110 оС
в течение 20 -30 минут.
Среда Городковой /среда
для получения аскоспор у дрожжей/:
Готовят гипсовые блоки с широким основанием и ставят в чашки Петри с небольшим
слоем пивного сусла. Жидкость должна смочить только часть их поверхности, остальная
из-за капиллярности будет влажной.
Мясного бульона - 1 мл
Глюкозы - 0,25 г
Натрий хлористый - 0,5 г
Желатина - 1 г
Воды - 100 мл
Стерилизуют 15 минут пря 110 оС.
Добавление к любой питательной среде пенициллина и стрептомицина 100 -200 ЕД.,
особенно при первичных посевах, значительно уменьшает возможность загрязнения
микробиотой.
Агар Чапека
Глюкоза – 20,0 г
K2HPO4 – 1,0 г
NaNO3 - 3,0 г
KCl – 0,5 г
MgSO4 – 0,5 г
FeSO4 – 0,015 г
Агар – 20,0 г
Водопроводная вода – 1 л
Стерилизуют 30 минут при 0,5 атм.; рН после стерилизации 6,2-6,4.
К оглавлению...
|